Comparison of promoter, DNA vector, and cationic carrier for efficient transfection of hMSCs from multiple donors and tissue sources.
Kozisek T., Hamann A., Samuelson L., Fudolig M., Pannier AK.
การศึกษาในห้องปฏิบัติการ ตีพิมพ์ในวารสาร Mol Ther Nucleic Acids ปี 2021 — สรุปอัตโนมัติจากบทคัดย่อ PubMed
หลักฐานจากการศึกษาในห้องปฏิบัติการและสัตว์ทดลอง เป็นรากฐานที่ช่วยให้เข้าใจกลไกและศักยภาพก่อนการศึกษาในมนุษย์ต่อไป
- ระดับ A · หลักฐานทางคลินิกค่อนข้างแข็งแรง
- ระดับ B · หลักฐานทางคลินิกที่กำลังเติบโตและมีสัญญาณเชิงบวก
- ระดับ C · งานวิจัยในมนุษย์ระยะต้นที่กำลังสำรวจประโยชน์
- ระดับ D · รากฐานทางวิทยาศาสตร์จากห้องปฏิบัติการและสัตว์ทดลอง
- กำลังศึกษาเพิ่มเติม · หัวข้อใหม่ที่นักวิจัยกำลังสำรวจอย่างต่อเนื่อง
ข้อมูลหน้านี้ดึงมาจากฐานข้อมูล PubMed โดยตรง คำอธิบายภาษาไทยเป็นสรุปอัตโนมัติจากข้อมูลบรรณานุกรมและบทคัดย่อ ไม่ใช่การแปลทั้งฉบับ และไม่ใช่คำแนะนำทางการแพทย์
- ประเภทการศึกษา
- การศึกษาในห้องปฏิบัติการ
- วารสาร
- Mol Ther Nucleic Acids (2021)
- ประเทศ
- United States
- จำนวนผู้เข้าร่วม (จากบทคัดย่อ)
- —
- แหล่งข้อมูล
- PubMed
- PMID
- 34513295
- DOI
- 10.1016/j.omtn.2021.06.018
บทคัดย่อ (ต้นฉบับภาษาอังกฤษ)
Human mesenchymal stem cells (hMSCs) are primary cells with high clinical relevance that could be enhanced through genetic modification. However, gene delivery, particularly through nonviral routes, is inefficient. To address the shortcomings of nonviral gene delivery to hMSCs, our lab has previously demonstrated that pharmacological "priming" of hMSCs with clinically approved drugs can increase transfection in hMSCs by modulating transfection-induced cytotoxicity. However, even with priming, hMSC transfection remains inefficient for clinical applications. This work takes a complementary approach to addressing the challenges of transfecting hMSCs by systematically investigating key transfection parameters for their effect on transgene expression. Specifically, we investigated two promoters (cytomegalovirus [CMV] and elongation factor 1 alpha), four DNA vectors (plasmid, plasmid with no F1 origin, minicircle, and mini-intronic plasmid), two cationic carriers (Lipofectamine 3000 and Turbofect), and four donors of hMSCs from two tissues (adipose and bone marrow) for efficient hMSC transfection. Following systematic comparison of each variable, we identified adipose-derived hMSCs transfected with mini-intronic plasmids containing the CMV promoter delivered using Lipofectamine 3000 as the parameters that produced the highest transfection levels. The data presented in this work can g
สิ่งที่งานวิจัยนี้ไม่ได้พิสูจน์
- • งานวิจัยนี้ไม่ได้พิสูจน์ว่า SVF เป็นการรักษาที่ได้รับการรับรอง หรือใช้แทนการรักษามาตรฐานได้
- • เป็นการศึกษาก่อนคลินิก ผลในสัตว์ทดลองหรือห้องปฏิบัติการไม่สามารถนำมาสรุปผลในมนุษย์ได้
ระดับหลักฐาน
หลักฐานจากการศึกษาในห้องปฏิบัติการและสัตว์ทดลอง เป็นรากฐานที่ช่วยให้เข้าใจกลไกและศักยภาพก่อนการศึกษาในมนุษย์ต่อไป
ดูวิธีจัดระดับหลักฐานดูงานวิจัยทั้งหมดที่เกี่ยวข้อง
กรองห้องสมุดงานวิจัยด้วยชื่อเรื่อง ชื่อผู้เขียน หรือปีที่ตีพิมพ์ของงานวิจัยนี้