Detection of Hypoxia in 2D and 3D Cell Culture Systems Using Genetically Encoded Fluorescent Hypoxia Sensors.
Fleischhammer TM., Dienemann S., Ulber N., Pepelanova I., Lavrentieva A.
การศึกษาในห้องปฏิบัติการ ตีพิมพ์ในวารสาร Methods Mol Biol ปี 2024 — สรุปอัตโนมัติจากบทคัดย่อ PubMed
หลักฐานจากการศึกษาในห้องปฏิบัติการและสัตว์ทดลอง เป็นรากฐานที่ช่วยให้เข้าใจกลไกและศักยภาพก่อนการศึกษาในมนุษย์ต่อไป
- ระดับ A · หลักฐานทางคลินิกค่อนข้างแข็งแรง
- ระดับ B · หลักฐานทางคลินิกที่กำลังเติบโตและมีสัญญาณเชิงบวก
- ระดับ C · งานวิจัยในมนุษย์ระยะต้นที่กำลังสำรวจประโยชน์
- ระดับ D · รากฐานทางวิทยาศาสตร์จากห้องปฏิบัติการและสัตว์ทดลอง
- กำลังศึกษาเพิ่มเติม · หัวข้อใหม่ที่นักวิจัยกำลังสำรวจอย่างต่อเนื่อง
ข้อมูลหน้านี้ดึงมาจากฐานข้อมูล PubMed โดยตรง คำอธิบายภาษาไทยเป็นสรุปอัตโนมัติจากข้อมูลบรรณานุกรมและบทคัดย่อ ไม่ใช่การแปลทั้งฉบับ และไม่ใช่คำแนะนำทางการแพทย์
- ประเภทการศึกษา
- การศึกษาในห้องปฏิบัติการ
- วารสาร
- Methods Mol Biol (2024)
- ประเทศ
- United States
- จำนวนผู้เข้าร่วม (จากบทคัดย่อ)
- —
- แหล่งข้อมูล
- PubMed
- PMID
- 38319567
- DOI
- 10.1007/978-1-0716-3633-6_2
บทคัดย่อ (ต้นฉบับภาษาอังกฤษ)
In vivo oxygen availability varies widely between cellular microenvironments, depending on the tissue of origin and its cellular niche. It has long been known that too high or too low oxygen concentrations can act as a biological stressor. Thus, the precise control of oxygen availability should be a consideration for cell culture optimization, especially in the field of three-dimensional (3D) cell culture. In this chapter, we describe a system for visualizing oxygen limitations at a cellular level using human adipose tissue-derived mesenchymal stem cells (hAD-MSCs) that were genetically modified to express a fluorescent hypoxia sensor. This sensor can detect the activation of hypoxia-induced factors (HIF) transcription factors that lead to the expression of the oxygen-independent fluorescent protein, UnaG, at low oxygen concentrations. The response of these hypoxia reporter cells can be evaluated in two-dimensional (2D) and 3D cultivation platforms during exposure to hypoxia (1% O 2 ) and normoxia (21% O 2 ) using fluorescence microscopy and flow cytometry. We show that hypoxia reporter MSCs exhibit a hypoxia-induced fluorescence signal in both 2D and 3D cultivation platforms with fast decay kinetics after reoxygenation, rendering it a valuable tool for studying the cellular microenvironment and regenerative potential of hAD-MSCs in an in vivo-like setting.
สิ่งที่งานวิจัยนี้ไม่ได้พิสูจน์
- • งานวิจัยนี้ไม่ได้พิสูจน์ว่า SVF เป็นการรักษาที่ได้รับการรับรอง หรือใช้แทนการรักษามาตรฐานได้
- • เป็นการศึกษาก่อนคลินิก ผลในสัตว์ทดลองหรือห้องปฏิบัติการไม่สามารถนำมาสรุปผลในมนุษย์ได้
ระดับหลักฐาน
หลักฐานจากการศึกษาในห้องปฏิบัติการและสัตว์ทดลอง เป็นรากฐานที่ช่วยให้เข้าใจกลไกและศักยภาพก่อนการศึกษาในมนุษย์ต่อไป
ดูวิธีจัดระดับหลักฐานดูงานวิจัยทั้งหมดที่เกี่ยวข้อง
กรองห้องสมุดงานวิจัยด้วยชื่อเรื่อง ชื่อผู้เขียน หรือปีที่ตีพิมพ์ของงานวิจัยนี้