ระดับ D· รากฐานทางวิทยาศาสตร์จากห้องปฏิบัติการและสัตว์ทดลองการศึกษาในสัตว์ทดลองPubMed

[EVALUATION OF AN OPTIMIZING PROTOCOL FOR FABRICATING A SCAFFOLD DERIVED FROM PORCINE SKELETAL MUSCLE EXTRACELLULAR MATRIX].

Zhang D., Tan Q., Tang S., Luo J., Zhang Y., Lü Q.

การศึกษาในสัตว์ทดลอง เกี่ยวกับ การอักเสบเรื้อรัง ตีพิมพ์ในวารสาร Zhongguo Xiu Fu Chong Jian Wai Ke Za Zhi ปี 2016 — สรุปอัตโนมัติจากบทคัดย่อ PubMed

เปิดรายการอ่านของฉัน
ระดับ D· รากฐานทางวิทยาศาสตร์จากห้องปฏิบัติการและสัตว์ทดลองระดับหลักฐานของงานวิจัยนี้

หลักฐานจากการศึกษาในห้องปฏิบัติการและสัตว์ทดลอง เป็นรากฐานที่ช่วยให้เข้าใจกลไกและศักยภาพก่อนการศึกษาในมนุษย์ต่อไป

  • ระดับ A · หลักฐานทางคลินิกค่อนข้างแข็งแรง
  • ระดับ B · หลักฐานทางคลินิกที่กำลังเติบโตและมีสัญญาณเชิงบวก
  • ระดับ C · งานวิจัยในมนุษย์ระยะต้นที่กำลังสำรวจประโยชน์
  • ระดับ D · รากฐานทางวิทยาศาสตร์จากห้องปฏิบัติการและสัตว์ทดลอง
  • กำลังศึกษาเพิ่มเติม · หัวข้อใหม่ที่นักวิจัยกำลังสำรวจอย่างต่อเนื่อง
อ่านคำอธิบายระดับหลักฐาน A–D

ข้อมูลหน้านี้ดึงมาจากฐานข้อมูล PubMed โดยตรง คำอธิบายภาษาไทยเป็นสรุปอัตโนมัติจากข้อมูลบรรณานุกรมและบทคัดย่อ ไม่ใช่การแปลทั้งฉบับ และไม่ใช่คำแนะนำทางการแพทย์

ประเภทการศึกษา
การศึกษาในสัตว์ทดลอง
วารสาร
Zhongguo Xiu Fu Chong Jian Wai Ke Za Zhi (2016)
ประเทศ
China
จำนวนผู้เข้าร่วม (จากบทคัดย่อ)
—
แหล่งข้อมูล
PubMed
PMID
29786211
DOI
10.7507/1002-1892.20160261
จำนวนการอ้างอิง
1

บทคัดย่อ (ต้นฉบับภาษาอังกฤษ)

To explore an optimized protocol of decellularization to fabricate an ideal scaffold derived from porcine skeletal muscle acellular matrix. Serial-step protocol of homogenating-milling-detergent method was used to fabricate decellularized porcine muscle tissue (DPMT) derived from native porcine skeletal muscle tissue from adult pig waist. Histological method was used to assess the effects of decellularization and degreasing. Sirius red staining was used to analyze collagen components. Scanning electron microscopy, BCA assay, and PicoGreen assay were used to evaluate the ultrastructure, total protein content, and DNA content in DPMT. The adipose derived stem cells (ADSCs), NIH3T3 cells, and human umbilical vein endothelial cells (HUVECs) were cultured in extraction liquor of DPMT in different concentrations for 1, 3, and 5 days, then the relative growth rate was calculated with cell counting kit 8 to assess the toxicity in vitro . Live/dead cell staining was used to evaluate the cytocompatibility by seeding HUVECs on the surface of DPMT and co-cultured in vitro for 3 days. For in vivo test, DPMT was subcutaneously implanted at dorsal site of male specific-pathogen free Sprague Dawley rats and harvested after 3, 7, 14, and 28 days. Gross obersvation was done and transverse diameter of remained DPMT in vivo was determined. HE staining and immunohistochemical staining of CD31 were

สิ่งที่งานวิจัยนี้ไม่ได้พิสูจน์

  • • งานวิจัยนี้ไม่ได้พิสูจน์ว่า SVF เป็นการรักษาที่ได้รับการรับรอง หรือใช้แทนการรักษามาตรฐานได้
  • • เป็นการศึกษาก่อนคลินิก ผลในสัตว์ทดลองหรือห้องปฏิบัติการไม่สามารถนำมาสรุปผลในมนุษย์ได้

ระดับหลักฐาน

หลักฐานจากการศึกษาในห้องปฏิบัติการและสัตว์ทดลอง เป็นรากฐานที่ช่วยให้เข้าใจกลไกและศักยภาพก่อนการศึกษาในมนุษย์ต่อไป

ดูวิธีจัดระดับหลักฐาน

ดูงานวิจัยทั้งหมดที่เกี่ยวข้อง

กรองห้องสมุดงานวิจัยด้วยชื่อเรื่อง ชื่อผู้เขียน หรือปีที่ตีพิมพ์ของงานวิจัยนี้

งานวิจัยที่เกี่ยวข้อง