Improved GMP compliant approach to manipulate lipoaspirates, to cryopreserve stromal vascular fraction, and to expand adipose stem cells in xeno-free media.
Agostini F., Rossi FM., Aldinucci D., Battiston M., Lombardi E., Zanolin S.
การศึกษาในห้องปฏิบัติการ ตีพิมพ์ในวารสาร Stem Cell Res Ther ปี 2018 — สรุปอัตโนมัติจากบทคัดย่อ PubMed
หลักฐานจากการศึกษาในห้องปฏิบัติการและสัตว์ทดลอง เป็นรากฐานที่ช่วยให้เข้าใจกลไกและศักยภาพก่อนการศึกษาในมนุษย์ต่อไป
- ระดับ A · หลักฐานทางคลินิกค่อนข้างแข็งแรง
- ระดับ B · หลักฐานทางคลินิกที่กำลังเติบโตและมีสัญญาณเชิงบวก
- ระดับ C · งานวิจัยในมนุษย์ระยะต้นที่กำลังสำรวจประโยชน์
- ระดับ D · รากฐานทางวิทยาศาสตร์จากห้องปฏิบัติการและสัตว์ทดลอง
- กำลังศึกษาเพิ่มเติม · หัวข้อใหม่ที่นักวิจัยกำลังสำรวจอย่างต่อเนื่อง
ข้อมูลหน้านี้ดึงมาจากฐานข้อมูล PubMed โดยตรง คำอธิบายภาษาไทยเป็นสรุปอัตโนมัติจากข้อมูลบรรณานุกรมและบทคัดย่อ ไม่ใช่การแปลทั้งฉบับ และไม่ใช่คำแนะนำทางการแพทย์
- ประเภทการศึกษา
- การศึกษาในห้องปฏิบัติการ
- วารสาร
- Stem Cell Res Ther (2018)
- ประเทศ
- England
- จำนวนผู้เข้าร่วม (จากบทคัดย่อ)
- —
- แหล่งข้อมูล
- PubMed
- PMID
- 29751821
- PMCID
- PMC5948766
- DOI
- 10.1186/s13287-018-0886-1
- จำนวนการอ้างอิง
- 44
บทคัดย่อ (ต้นฉบับภาษาอังกฤษ)
Background The stromal vascular fraction (SVF) derived from adipose tissue contains adipose-derived stromal/stem cells (ASC) and can be used for regenerative applications. Thus, a validated protocol for SVF isolation, freezing, and thawing is required to manage product administration. To comply with Good Manufacturing Practice (GMP), fetal bovine serum (FBS), used to expand ASC in vitro, could be replaced by growth factors from platelet concentrates. Methods Throughout each protocol, GMP-compliant reagents and devices were used. SVF cells were isolated from lipoaspirates by a standardized enzymatic protocol. Cells were cryopreserved in solutions containing different albumin or serum and dimethylsulfoxide (DMSO) concentrations. Before and after cryopreservation, we analyzed: cell viability (by Trypan blue); immunophenotype (by flow cytometry); colony-forming unit-fibroblast (CFU-F) formation; and differentiation potential. ASC, seeded at different densities, were expanded in presence of 10% FBS or 5% supernatant rich in growth factors (SRGF) from platelets. The differentiation potential and cell transformation grade were tested in expanded ASC. Results We demonstrated that SVF can be obtained with a consistent yield (about 185 × 10 3 cells/ml lipoaspirate) and viability (about 82%). Lipoaspirate manipulation after overnight storage at +4 °C reduced cell viability (-11.6%). The r
สิ่งที่งานวิจัยนี้ไม่ได้พิสูจน์
- • งานวิจัยนี้ไม่ได้พิสูจน์ว่า SVF เป็นการรักษาที่ได้รับการรับรอง หรือใช้แทนการรักษามาตรฐานได้
- • เป็นการศึกษาก่อนคลินิก ผลในสัตว์ทดลองหรือห้องปฏิบัติการไม่สามารถนำมาสรุปผลในมนุษย์ได้
ระดับหลักฐาน
หลักฐานจากการศึกษาในห้องปฏิบัติการและสัตว์ทดลอง เป็นรากฐานที่ช่วยให้เข้าใจกลไกและศักยภาพก่อนการศึกษาในมนุษย์ต่อไป
ดูวิธีจัดระดับหลักฐานดูงานวิจัยทั้งหมดที่เกี่ยวข้อง
กรองห้องสมุดงานวิจัยด้วยชื่อเรื่อง ชื่อผู้เขียน หรือปีที่ตีพิมพ์ของงานวิจัยนี้