ระดับ D· รากฐานทางวิทยาศาสตร์จากห้องปฏิบัติการและสัตว์ทดลองการศึกษาในห้องปฏิบัติการPubMed

A multi-colour confocal microscopy method for identifying and enumerating macrophage subtypes and adherent cells in the stromal vascular fraction of human adipose.

Dey A., Ni Z., Johnson MS., Sedger LM.

การศึกษาในห้องปฏิบัติการ เกี่ยวกับ ใบหน้าและผิว ตีพิมพ์ในวารสาร J Immunol Methods ปี 2021 — สรุปอัตโนมัติจากบทคัดย่อ PubMed

เปิดรายการอ่านของฉัน
ระดับ D· รากฐานทางวิทยาศาสตร์จากห้องปฏิบัติการและสัตว์ทดลองระดับหลักฐานของงานวิจัยนี้

หลักฐานจากการศึกษาในห้องปฏิบัติการและสัตว์ทดลอง เป็นรากฐานที่ช่วยให้เข้าใจกลไกและศักยภาพก่อนการศึกษาในมนุษย์ต่อไป

  • ระดับ A · หลักฐานทางคลินิกค่อนข้างแข็งแรง
  • ระดับ B · หลักฐานทางคลินิกที่กำลังเติบโตและมีสัญญาณเชิงบวก
  • ระดับ C · งานวิจัยในมนุษย์ระยะต้นที่กำลังสำรวจประโยชน์
  • ระดับ D · รากฐานทางวิทยาศาสตร์จากห้องปฏิบัติการและสัตว์ทดลอง
  • กำลังศึกษาเพิ่มเติม · หัวข้อใหม่ที่นักวิจัยกำลังสำรวจอย่างต่อเนื่อง
อ่านคำอธิบายระดับหลักฐาน A–D

ข้อมูลหน้านี้ดึงมาจากฐานข้อมูล PubMed โดยตรง คำอธิบายภาษาไทยเป็นสรุปอัตโนมัติจากข้อมูลบรรณานุกรมและบทคัดย่อ ไม่ใช่การแปลทั้งฉบับ และไม่ใช่คำแนะนำทางการแพทย์

ประเภทการศึกษา
การศึกษาในห้องปฏิบัติการ
วารสาร
J Immunol Methods (2021)
ประเทศ
Netherlands
จำนวนผู้เข้าร่วม (จากบทคัดย่อ)
—
แหล่งข้อมูล
PubMed
PMID
33587915
DOI
10.1016/j.jim.2021.112988
จำนวนการอ้างอิง
3

บทคัดย่อ (ต้นฉบับภาษาอังกฤษ)

This study examines leukocytes present in lymphoedema (LE) adipose tissue (AT) by multi-colour confocal microscopy. LE AT, collected by liposuction surgery, was digested with collagenase to separate adipocytes from other tissue cells, comprising blood and lymphatic endothelial cells, fibroblasts, and all vessel- and tissue-resident leukocytes - the stromal vascular fraction (SVF). SVF cells were activated with phorbol 12-myristate 13-acetate (PMA) and ionomycin, adding Brefeldin-A to prevent cytokine secretion during the final 4 hours. Cells were incubated with CD11b-FITC and CD40-APC (M1 MØ)' or CD206-APC (M2 MØ) specific antibodies, fixed, permeabilised, then incubated with either (1) anti-TNF-PE, (2) anti- IL-1β-PE, (3) anti-IL-6-PE, (4) anti-IL-4-PE, (5) anti-TGFβ-PE or (6) isotype-IgG-PE (control), and stained with Hoechst 33342, preserved in permanent mounting media and examined by confocal microscopy. The FITC, PE and APC fluorescence channels were set to achieve minimal cross-channel emission using single-colour controls and voltages set for optimal detection by thresholding on isotype-IgG stained activated cells. Finally, transmission and z-stack images were captured. Cells were analysed as regions of interest (ROI) based on Hoechst-33342 then enumerated as FITC + , FITC + APC + or FITC + APC + PE + using an ImageJ script and exported into Excel. This permitted the exa

สิ่งที่งานวิจัยนี้ไม่ได้พิสูจน์

  • • งานวิจัยนี้ไม่ได้พิสูจน์ว่า SVF เป็นการรักษาที่ได้รับการรับรอง หรือใช้แทนการรักษามาตรฐานได้
  • • เป็นการศึกษาก่อนคลินิก ผลในสัตว์ทดลองหรือห้องปฏิบัติการไม่สามารถนำมาสรุปผลในมนุษย์ได้

ระดับหลักฐาน

หลักฐานจากการศึกษาในห้องปฏิบัติการและสัตว์ทดลอง เป็นรากฐานที่ช่วยให้เข้าใจกลไกและศักยภาพก่อนการศึกษาในมนุษย์ต่อไป

ดูวิธีจัดระดับหลักฐาน
Adipose TissueCell CountCell SeparationCells, CulturedHumansMacrophagesMicroscopy, Confocal

ดูงานวิจัยทั้งหมดที่เกี่ยวข้อง

กรองห้องสมุดงานวิจัยด้วยชื่อเรื่อง ชื่อผู้เขียน หรือปีที่ตีพิมพ์ของงานวิจัยนี้

งานวิจัยที่เกี่ยวข้อง