ระดับ D· รากฐานทางวิทยาศาสตร์จากห้องปฏิบัติการและสัตว์ทดลองการศึกษาในสัตว์ทดลองPubMed

Optimized intraorbital optic nerve exposure: a translational surgical paradigm for neural regeneration in rat model.

Zhu H., Li G., Zhu M., Ma J., Shen P., Zhang S.

การศึกษาในสัตว์ทดลอง เกี่ยวกับ ใบหน้าและผิว ตีพิมพ์ในวารสาร Int Ophthalmol ปี 2025 — สรุปอัตโนมัติจากบทคัดย่อ PubMed

เปิดรายการอ่านของฉัน
ระดับ D· รากฐานทางวิทยาศาสตร์จากห้องปฏิบัติการและสัตว์ทดลองระดับหลักฐานของงานวิจัยนี้

หลักฐานจากการศึกษาในห้องปฏิบัติการและสัตว์ทดลอง เป็นรากฐานที่ช่วยให้เข้าใจกลไกและศักยภาพก่อนการศึกษาในมนุษย์ต่อไป

  • ระดับ A · หลักฐานทางคลินิกค่อนข้างแข็งแรง
  • ระดับ B · หลักฐานทางคลินิกที่กำลังเติบโตและมีสัญญาณเชิงบวก
  • ระดับ C · งานวิจัยในมนุษย์ระยะต้นที่กำลังสำรวจประโยชน์
  • ระดับ D · รากฐานทางวิทยาศาสตร์จากห้องปฏิบัติการและสัตว์ทดลอง
  • กำลังศึกษาเพิ่มเติม · หัวข้อใหม่ที่นักวิจัยกำลังสำรวจอย่างต่อเนื่อง
อ่านคำอธิบายระดับหลักฐาน A–D

ข้อมูลหน้านี้ดึงมาจากฐานข้อมูล PubMed โดยตรง คำอธิบายภาษาไทยเป็นสรุปอัตโนมัติจากข้อมูลบรรณานุกรมและบทคัดย่อ ไม่ใช่การแปลทั้งฉบับ และไม่ใช่คำแนะนำทางการแพทย์

ประเภทการศึกษา
การศึกษาในสัตว์ทดลอง
วารสาร
Int Ophthalmol (2025)
ประเทศ
Netherlands
จำนวนผู้เข้าร่วม (จากบทคัดย่อ)
—
แหล่งข้อมูล
PubMed
PMID
40504418
DOI
10.1007/s10792-025-03621-3

บทคัดย่อ (ต้นฉบับภาษาอังกฤษ)

To establish a standardized microsurgical protocol for atraumatic exposure of extended intraorbital optic nerve segments in rat models, enabling precision interventions in neural regeneration research. Aseptic surgical procedures were performed on anesthetized Sprague-Dawley rats, involving three critical steps: (1) precision skin incision with bilateral silk suture retraction, (2) meticulous periorbital adipose tissue dissection, and (3) atraumatic full-length optic nerve exposure. Post-exposure interventions comprised optic nerve crush (ONC) modeling, intrasheath injection, scaffold and hydrogel implantation. Validation encompassed functional (Functional Visual Evoked Potentials, FVEP), vascular (Fluorescein Fundus Angiography, FFA), and cellular (RGC density and axonal integrity via cholera toxin B subunit (CTB) anterograde tracing) assesments. The approach reliably exposed 5-mm intraorbital optic nerve segments (4.96 ± 0.13 mm) with intact vasculature (FFA-confirmed perfusion). Complete ONC validation was demonstrated through three principal findings: (a) Complete FVEP signal ablation (Ampliude P1 (OS/OD) pre-operation 1.05 ± 0.19, sham 1.00 ± 0.06, ONC 0.03 ± 0.02, * p < 0.05), (b) Progressive RGC loss quantified by CTB anterograde signal attenuation (Week 1: 1496.7 ± 186.3; Week 2: 146.3 ± 13.0; Week 3: 110.0 ± 12.4;Week 4: 78.75 ± 5.1, * p < 0.05), and (c) Axonal discont

สิ่งที่งานวิจัยนี้ไม่ได้พิสูจน์

  • • งานวิจัยนี้ไม่ได้พิสูจน์ว่า SVF เป็นการรักษาที่ได้รับการรับรอง หรือใช้แทนการรักษามาตรฐานได้
  • • เป็นการศึกษาก่อนคลินิก ผลในสัตว์ทดลองหรือห้องปฏิบัติการไม่สามารถนำมาสรุปผลในมนุษย์ได้

ระดับหลักฐาน

หลักฐานจากการศึกษาในห้องปฏิบัติการและสัตว์ทดลอง เป็นรากฐานที่ช่วยให้เข้าใจกลไกและศักยภาพก่อนการศึกษาในมนุษย์ต่อไป

ดูวิธีจัดระดับหลักฐาน
AnimalsRats, Sprague-DawleyNerve RegenerationRatsOptic Nerve InjuriesDisease Models, AnimalOptic NerveEvoked Potentials, VisualMicrosurgeryRetinal Ganglion Cells

ดูงานวิจัยทั้งหมดที่เกี่ยวข้อง

กรองห้องสมุดงานวิจัยด้วยชื่อเรื่อง ชื่อผู้เขียน หรือปีที่ตีพิมพ์ของงานวิจัยนี้

งานวิจัยที่เกี่ยวข้อง