SVF
ระดับ D· รากฐานทางวิทยาศาสตร์จากห้องปฏิบัติการและสัตว์ทดลองการศึกษาในห้องปฏิบัติการPubMed

Setting a Successful Sorting for Extracellular Vesicle Isolation.

Romanò M., Boselli D., Ragni E., de Girolamo L., Villa C.

การศึกษาในห้องปฏิบัติการ เกี่ยวกับ การอักเสบเรื้อรัง ตีพิมพ์ในวารสาร J Vis Exp ปี 2024 — สรุปอัตโนมัติจากบทคัดย่อ PubMed

เปิดรายการอ่านของฉัน
ระดับ D· รากฐานทางวิทยาศาสตร์จากห้องปฏิบัติการและสัตว์ทดลองระดับหลักฐานของงานวิจัยนี้

หลักฐานจากการศึกษาในห้องปฏิบัติการและสัตว์ทดลอง เป็นรากฐานที่ช่วยให้เข้าใจกลไกและศักยภาพก่อนการศึกษาในมนุษย์ต่อไป

  • ระดับ A · หลักฐานทางคลินิกค่อนข้างแข็งแรง
  • ระดับ B · หลักฐานทางคลินิกที่กำลังเติบโตและมีสัญญาณเชิงบวก
  • ระดับ C · งานวิจัยในมนุษย์ระยะต้นที่กำลังสำรวจประโยชน์
  • ระดับ D · รากฐานทางวิทยาศาสตร์จากห้องปฏิบัติการและสัตว์ทดลอง
  • กำลังศึกษาเพิ่มเติม · หัวข้อใหม่ที่นักวิจัยกำลังสำรวจอย่างต่อเนื่อง
อ่านคำอธิบายระดับหลักฐาน A–D

ข้อมูลหน้านี้ดึงมาจากฐานข้อมูล PubMed โดยตรง คำอธิบายภาษาไทยเป็นสรุปอัตโนมัติจากข้อมูลบรรณานุกรมและบทคัดย่อ ไม่ใช่การแปลทั้งฉบับ และไม่ใช่คำแนะนำทางการแพทย์

ประเภทการศึกษา
การศึกษาในห้องปฏิบัติการ
วารสาร
J Vis Exp (2024)
ประเทศ
United States
จำนวนผู้เข้าร่วม (จากบทคัดย่อ)
—
แหล่งข้อมูล
PubMed
PMID
39465952
DOI
10.3791/67232

บทคัดย่อ (ต้นฉบับภาษาอังกฤษ)

Extracellular vesicles (EVs) released by mesenchymal stromal cells (MSCs) contain a set of microRNAs with regenerative and anti-inflammatory roles. Therefore, purified MSC-EVs are envisioned as a next-generation therapeutic option for a wide array of diseases. In this protocol, we report the strategy for successfully sorting EVs from the supernatant of adipose-derived MSCs (ASCs), often used in orthopedics regenerative medicine applications. First, we described the sample preparation, focusing on EV isolation and labeling steps with carboxyfluorescein succinimidyl ester (CFSE) for fluorescence detection; subsequently, we detailed the sorting process, which constitutes the main part of the protocol. In addition to the rules defined by MISEV 2023 and MIFlowCyt EV guidelines, we applied specific experimental conditions concerning nozzle size, frequency, and sheath pressure. Morphological parameters are established using beads of diameters selected to cover the theoretical range of EV size. After ASC-EVs sorting, we performed a purity check of the sorted fraction by re-analyzing it with the sorter and verifying the EV size distribution with the nanoparticle tracking analysis technique. Due to the increasing importance of EVs, having a pure population to study and characterize is becoming crucial. Here, we demonstrate a winner strategy to set up sorting to achieve this goal.

สิ่งที่งานวิจัยนี้ไม่ได้พิสูจน์

  • • งานวิจัยนี้ไม่ได้พิสูจน์ว่า SVF เป็นการรักษาที่ได้รับการรับรอง หรือใช้แทนการรักษามาตรฐานได้
  • • เป็นการศึกษาก่อนคลินิก ผลในสัตว์ทดลองหรือห้องปฏิบัติการไม่สามารถนำมาสรุปผลในมนุษย์ได้

ระดับหลักฐาน

หลักฐานจากการศึกษาในห้องปฏิบัติการและสัตว์ทดลอง เป็นรากฐานที่ช่วยให้เข้าใจกลไกและศักยภาพก่อนการศึกษาในมนุษย์ต่อไป

ดูวิธีจัดระดับหลักฐาน
Extracellular VesiclesMesenchymal Stem CellsHumansAdipose TissueFlow CytometryFluoresceinsFluorescent Dyes
การอักเสบเรื้อรัง
ดูต้นฉบับบน PubMedDOI

ดูงานวิจัยทั้งหมดที่เกี่ยวข้อง

กรองห้องสมุดงานวิจัยด้วยชื่อเรื่อง ชื่อผู้เขียน หรือปีที่ตีพิมพ์ของงานวิจัยนี้

ดูทั้งหมด: หัวข้อ “setting successful sorting”ดูทั้งหมด: ผู้เขียน romanòดูทั้งหมด: ปี 2024

งานวิจัยที่เกี่ยวข้อง