ระดับ D· รากฐานทางวิทยาศาสตร์จากห้องปฏิบัติการและสัตว์ทดลองการศึกษาในห้องปฏิบัติการPubMed

Proliferative and phenotypical characteristics of human adipose tissue-derived stem cells: comparison of Ficoll gradient centrifugation and red blood cell lysis buffer treatment purification methods.

Najar M., Rodrigues RM., Buyl K., Branson S., Vanhaecke T., Lagneaux L.

การศึกษาในห้องปฏิบัติการ เกี่ยวกับ การปรับภูมิคุ้มกัน ตีพิมพ์ในวารสาร Cytotherapy ปี 2014 — สรุปอัตโนมัติจากบทคัดย่อ PubMed

เปิดรายการอ่านของฉัน
ระดับ D· รากฐานทางวิทยาศาสตร์จากห้องปฏิบัติการและสัตว์ทดลองระดับหลักฐานของงานวิจัยนี้

หลักฐานจากการศึกษาในห้องปฏิบัติการและสัตว์ทดลอง เป็นรากฐานที่ช่วยให้เข้าใจกลไกและศักยภาพก่อนการศึกษาในมนุษย์ต่อไป

  • ระดับ A · หลักฐานทางคลินิกค่อนข้างแข็งแรง
  • ระดับ B · หลักฐานทางคลินิกที่กำลังเติบโตและมีสัญญาณเชิงบวก
  • ระดับ C · งานวิจัยในมนุษย์ระยะต้นที่กำลังสำรวจประโยชน์
  • ระดับ D · รากฐานทางวิทยาศาสตร์จากห้องปฏิบัติการและสัตว์ทดลอง
  • กำลังศึกษาเพิ่มเติม · หัวข้อใหม่ที่นักวิจัยกำลังสำรวจอย่างต่อเนื่อง
อ่านคำอธิบายระดับหลักฐาน A–D

ข้อมูลหน้านี้ดึงมาจากฐานข้อมูล PubMed โดยตรง คำอธิบายภาษาไทยเป็นสรุปอัตโนมัติจากข้อมูลบรรณานุกรมและบทคัดย่อ ไม่ใช่การแปลทั้งฉบับ และไม่ใช่คำแนะนำทางการแพทย์

ประเภทการศึกษา
การศึกษาในห้องปฏิบัติการ
วารสาร
Cytotherapy (2014)
ประเทศ
England
จำนวนผู้เข้าร่วม (จากบทคัดย่อ)
—
แหล่งข้อมูล
PubMed
PMID
25065636
DOI
10.1016/j.jcyt.2014.05.021
จำนวนการอ้างอิง
19

บทคัดย่อ (ต้นฉบับภาษาอังกฤษ)

Background aims Adult human subcutaneous adipose tissue harbors a multipotent stem cell population, the so-called human adipose tissue-derived mesenchymal stromal cells (AT-MSCs). These cells are able to differentiate in vitro into various cell types and possess immunomodulatory features. Yet procedures to obtain AT-MSCs can vary significantly. The two most extensively used AT-MSC purification techniques are (i) density gradient centrifugation using Ficoll and (ii) red blood cell (RBC) lysis buffer treatment of the stromal vascular fraction. In the context of potential clinical cell therapy, the stem cell yield after purification and upon consecutive passages, as well as the purity of the obtained cell population, are of utmost importance. Methods We investigated the expansion capacity and purity of AT-MSCs purified by both procedures immediately after isolation and upon consecutive passages. We also investigated possible purification-dependent differences in their expression of immune-inhibitory factors and cell adhesion molecules. Results We found that RBC lysis buffer treatment is a more robust and easier method to purify AT-MSCs than density gradient fractionation. However, the resulting AT-MSC-RBC population contains a significantly higher number of CD34(+) cells, particularly during the first passages after plating. From passage 4 onward, no significant differences could

สิ่งที่งานวิจัยนี้ไม่ได้พิสูจน์

  • • งานวิจัยนี้ไม่ได้พิสูจน์ว่า SVF เป็นการรักษาที่ได้รับการรับรอง หรือใช้แทนการรักษามาตรฐานได้
  • • เป็นการศึกษาก่อนคลินิก ผลในสัตว์ทดลองหรือห้องปฏิบัติการไม่สามารถนำมาสรุปผลในมนุษย์ได้

ระดับหลักฐาน

หลักฐานจากการศึกษาในห้องปฏิบัติการและสัตว์ทดลอง เป็นรากฐานที่ช่วยให้เข้าใจกลไกและศักยภาพก่อนการศึกษาในมนุษย์ต่อไป

ดูวิธีจัดระดับหลักฐาน
Adipose TissueApoptosisBuffersCell DifferentiationCell ProliferationCell SeparationCells, CulturedCentrifugation, Density GradientErythrocytesFicoll

ดูงานวิจัยทั้งหมดที่เกี่ยวข้อง

กรองห้องสมุดงานวิจัยด้วยชื่อเรื่อง ชื่อผู้เขียน หรือปีที่ตีพิมพ์ของงานวิจัยนี้

งานวิจัยที่เกี่ยวข้อง