ระดับ D· รากฐานทางวิทยาศาสตร์จากห้องปฏิบัติการและสัตว์ทดลองการศึกษาในห้องปฏิบัติการPubMed

Three-dimensionally decellularized human amniotic membrane scaffold: structure, processing, and biological properties.

Heidari B., Shams S., Akbari N., Zandsalimi K.

การศึกษาในห้องปฏิบัติการ เกี่ยวกับ แผลเรื้อรัง ตีพิมพ์ในวารสาร Cell Tissue Bank ปี 2025 — สรุปอัตโนมัติจากบทคัดย่อ PubMed

เปิดรายการอ่านของฉัน
ระดับ D· รากฐานทางวิทยาศาสตร์จากห้องปฏิบัติการและสัตว์ทดลองระดับหลักฐานของงานวิจัยนี้

หลักฐานจากการศึกษาในห้องปฏิบัติการและสัตว์ทดลอง เป็นรากฐานที่ช่วยให้เข้าใจกลไกและศักยภาพก่อนการศึกษาในมนุษย์ต่อไป

  • ระดับ A · หลักฐานทางคลินิกค่อนข้างแข็งแรง
  • ระดับ B · หลักฐานทางคลินิกที่กำลังเติบโตและมีสัญญาณเชิงบวก
  • ระดับ C · งานวิจัยในมนุษย์ระยะต้นที่กำลังสำรวจประโยชน์
  • ระดับ D · รากฐานทางวิทยาศาสตร์จากห้องปฏิบัติการและสัตว์ทดลอง
  • กำลังศึกษาเพิ่มเติม · หัวข้อใหม่ที่นักวิจัยกำลังสำรวจอย่างต่อเนื่อง
อ่านคำอธิบายระดับหลักฐาน A–D

ข้อมูลหน้านี้ดึงมาจากฐานข้อมูล PubMed โดยตรง คำอธิบายภาษาไทยเป็นสรุปอัตโนมัติจากข้อมูลบรรณานุกรมและบทคัดย่อ ไม่ใช่การแปลทั้งฉบับ และไม่ใช่คำแนะนำทางการแพทย์

ประเภทการศึกษา
การศึกษาในห้องปฏิบัติการ
วารสาร
Cell Tissue Bank (2025)
ประเทศ
Netherlands
จำนวนผู้เข้าร่วม (จากบทคัดย่อ)
—
แหล่งข้อมูล
PubMed
PMID
41085865
DOI
10.1007/s10561-025-10196-x

บทคัดย่อ (ต้นฉบับภาษาอังกฤษ)

Tissue engineering (TE) combines cells, biomaterials, and bioactive molecules to create functional tissue constructs aimed at restoring tissue function and improving patient outcomes. The human amniotic membrane (HAM) is a widely studied biological scaffold for various biomedical applications. Decellularization of HAM (dHAM) is necessary to reduce graft rejection but depletes stem cells and growth factors, potentially limiting regenerative potential. This study investigates the recellularization of dHAM with adipose-derived mesenchymal stem cells (AdMSCs) to enhance its bioactivity using a novel 3D seeding technique. Decellularized HAM (dHAM) was recellularized with AdMSCs employing a novel 3D seeding method to achieve uniform cell distribution within the scaffold. The viability, differentiation potential, and morphology of AdMSCs were assessed in both 2D and 3D culture systems. Flow cytometry was used to evaluate the differentiation capacity of AdMSCs into osteogenic, chondrogenic, and adipogenic lineages. Field emission scanning electron microscopy (FESEM) was utilized to analyze cell morphology and penetration depth within the scaffold. AdMSC viability was comparable between 2 and 3D cultures, indicating that dHAM scaffolds effectively support cell survival regardless of the culture technique. The composition and properties of dHAM preserved cell functions in both culture sy

สิ่งที่งานวิจัยนี้ไม่ได้พิสูจน์

  • • งานวิจัยนี้ไม่ได้พิสูจน์ว่า SVF เป็นการรักษาที่ได้รับการรับรอง หรือใช้แทนการรักษามาตรฐานได้
  • • เป็นการศึกษาก่อนคลินิก ผลในสัตว์ทดลองหรือห้องปฏิบัติการไม่สามารถนำมาสรุปผลในมนุษย์ได้

ระดับหลักฐาน

หลักฐานจากการศึกษาในห้องปฏิบัติการและสัตว์ทดลอง เป็นรากฐานที่ช่วยให้เข้าใจกลไกและศักยภาพก่อนการศึกษาในมนุษย์ต่อไป

ดูวิธีจัดระดับหลักฐาน
HumansAmnionTissue ScaffoldsMesenchymal Stem CellsCell DifferentiationTissue EngineeringCell SurvivalAdipose TissueCells, CulturedDecellularized Extracellular Matrix

ดูงานวิจัยทั้งหมดที่เกี่ยวข้อง

กรองห้องสมุดงานวิจัยด้วยชื่อเรื่อง ชื่อผู้เขียน หรือปีที่ตีพิมพ์ของงานวิจัยนี้

งานวิจัยที่เกี่ยวข้อง